Einfluss kommerziell erhältlicher mikrobieller Impfmittel auf das Wachstum von Bermudagras

Aug 24, 2023

März 2023 | Gerald M. Henry, Ph.D.; Connor Bolton; Miguel Cabrera, Ph.D.; Mussie Habteselassie, Ph.D.

Abbildung 1.Es wurden Gewächshausexperimente durchgeführt, um den Einfluss mikrobieller Impfmittel auf die Etablierung von Sahara-II-Bermudagras aus Samen zu bestimmen.Fotos von Gerald M. Henry

Bermudagras (Cynodon spp.) ist eine der am häufigsten verwendeten Rasengrasarten im Südosten der Vereinigten Staaten, da es ein dichtes Rasengrasdach bildet, das übermäßige Abnutzung und Verkehr verträgt. Folglich ist Bermudagras einer der größten Stickstoffverbraucher und benötigt während der Vegetationsperiode etwa 22 bis 44 Pfund Stickstoff pro Acre (24,7 bis 49,3 Kilogramm pro Hektar) pro Monat (4). Der Zugang zu Fruchtbarkeit ist äußerst wichtig, da Stickstoff ein Bestandteil zahlreicher biochemischer Bestandteile der Pflanze ist, darunter Chlorophyll, Aminosäuren und die Enzyme, die für das Rasenwachstum und die Stoffwechselfunktion von wesentlicher Bedeutung sind (1).

Düngemittel sind teuer und können sich negativ auf die Umwelt auswirken, wenn sie falsch in übermäßigen Mengen oder mit unsachgemäßen Techniken ausgebracht werden. Das Haber-Bosch-Verfahren ist ein industrielles Stickstofffixierungsverfahren, das hauptsächlich für die derzeitige synthetische Produktion von Ammoniak verantwortlich ist (6). Das bei dieser Reaktion entstehende Ammoniak wird überwiegend als Stickstoffdünger in Form von Ammoniumnitrat und Harnstoff verwendet. Zu den potenziellen Umweltauswirkungen dieses Produktionsprozesses und der anschließenden Düngemittelausbringung gehören jedoch: Stickstoffauswaschung oder -abfluss, was zu Grundwasserverschmutzung und Eutrophierung führt; atmosphärische Ablagerung von Nitraten und Ammoniak; und erhöhte Treibhausgasemissionen, einschließlich Lachgas (8).

Die aktuelle Forschung zur Nachhaltigkeit von Rasengras zielt darauf ab, Alternativen zu herkömmlichen Stickstoffdüngeranwendungen zu untersuchen, um negative Auswirkungen auf die Umwelt zu begrenzen. Zu den Biostimulanzien gehört eine Reihe mikrobieller und nichtmikrobieller Produkte, die die Ernährung, Etablierung und das Wachstum der Pflanzen sowie die Stresstoleranz verbessern sollen (2). Bisherige Forschungsarbeiten zu mikrobiellen Biostimulanzien in Rasensystemen waren begrenzt und inkonsistent. Obwohl mikrobielle Impfmittel häufiger für den Einsatz in Garten- und Agrarkulturen eingesetzt werden, gibt es hinsichtlich ihrer Verwendung und Wirksamkeit einige Herausforderungen, von denen einige spezifischer für Rasengrassysteme sind. Die meisten kommerziellen Produkte enthalten fremde Mikroorganismen, die Schwierigkeiten haben, mit einheimischen Populationen zu konkurrieren, die an regionale Umweltbedingungen gewöhnt sind (7). Inputs für die Rasenbewirtschaftung wie Düngemittel, Pestizide und Bewässerung sowie Umweltprobleme wie Rasenarten und die Zusammensetzung des Bodenprofils können zu anpassungsfähigeren mikrobiellen Gemeinschaften führen, die eingeführte Organismen schnell verdrängen (5). Frühere Forschungen zur Bewertung mikrobieller Impfmittel in Rasengras konzentrierten sich hauptsächlich auf Rasengrasarten der kühlen Jahreszeit, wobei ein Großteil der Forschung in kontrollierten Umgebungen durchgeführt wurde. Darüber hinaus liegen noch begrenzte Informationen über den Zeitpunkt der Anwendung, das Trägervolumen, die Wasserqualität, die Impfgröße und die Notwendigkeit sequenzieller Anwendungen in Rasenumgebungen vor.

Figur 2.Mit einer Spritze wurden mikrobielle Impfmittel gleichmäßig auf die Oberfläche jedes Topfes aufgetragen.

Feldversuche

Die Versuche wurden 2021 im Athens Turfgrass Research and Education Centre (ATREC) in Athens, Georgia, und auf einem Wohnrasen (BO) in Bogart, Georgia, durchgeführt. Für jeden Standort wurden der Nährstoffstatus des Bodens und der Gehalt an organischer Substanz bestimmt. Die Forschung bei ATREC und BO wurde an einem 5-jährigen bzw. 2-jährigen Tifway-Hybrid-Bermudagras durchgeführt, die jeweils auf 2 Zoll (5,1 Zentimeter) gehalten wurden. Die Behandlungen begannen am 5. Juli 2021 bei ATREC und am 21. Juli 2021 bei BO und umfassten einzelne und aufeinanderfolgende Anwendungen von Klebsiella variicola 137–1036, Formulierung 1 (KLEB1) mit einer Impfmenge von 0,2 Gallonen pro Acre (1,87 Liter pro Hektar). ) (1,2 × 1010 koloniebildende Einheiten pro Flüssigunze/29,6 Milliliter) und ein Trägervolumen von 321 Gallonen pro Acre (3.003 Liter pro Hektar); Klebsiella variicola 137–1036 Formulierung 2 (KLEB2) mit einer Impfmenge von 0,2 Gallonen pro Acre (1,2 × 1010 koloniebildende Einheiten pro Flüssigunze) und einem Trägervolumen von 321 Gallonen pro Acre; Gluconacetobacter diazotrophicus (GLUC) mit einer Impfmenge von 0,1 Gallonen pro Acre (0,94 Liter pro Hektar) (3 × 108 koloniebildende Einheiten pro Flüssigunze) und einem Trägervolumen von 20 Gallonen pro Acre (187 Liter pro Hektar); und Azospirillum brasilense (AZOS) mit einer Impfmenge von 0,27 Gallonen pro Acre (2,53 Liter pro Hektar) (6 × 106 koloniebildende Einheiten pro Flüssigunze) und einem Trägervolumen von 96 Gallonen pro Acre (898 Liter pro Hektar). Drei Wochen nach der Erstbehandlung (WAIT) wurden aufeinanderfolgende Anwendungen durchgeführt. Zum Vergleich wurde ein unbehandelter Scheck beigefügt. Mikrobielle Impfmittel wurden mit einer Gießkanne in destilliertem Wasser ausgebracht. Während der Dauer jedes Versuchs wurde an beiden Standorten kein Dünger ausgebracht.

Die Rasenfarbe (TC), die Rasenqualität (TQ) und der normalisierte Differenzvegetationsindex (NDVI) wurden zu Beginn des Versuchs sowie nach 2, 6 und 8 WAIT aufgezeichnet. Visuelle Bewertungen von TC und TQ wurden auf einer Skala von 1 bis 9 aufgezeichnet, wobei eine Bewertung von 6 für TC und TQ als akzeptabel angesehen wurde. Messungen des Kohlenstoffausflusses (CX) (Mikromol pro Quadratmeter pro Sekunde; µmol m-2 s-1) wurden zu Versuchsbeginn und bei 4 und 8 WAIT mit einem automatisierten LI-COR 8100A-System aufgezeichnet, um die mikrobielle Atmung von Pflanzenwurzeln und Boden zu bestimmen sowie die gesamte Stoffwechselaktivität jedes Systems (3). Die zeitliche Änderung (Δ) für CX wurde bei 4 und 8 WAIT durch Vergleich der Messwerte an jedem Datum mit den Anfangsmessungen bestimmt.

Tabelle 1.Normalisierter Differenzvegetationsindex (NDVI), Rasenfarbe (TC) und Rasenqualität (TQ) von reifem Tifway-Hybrid-Bermudagras als Reaktion auf mikrobielle Impfungen, die im Sommer 2021 im Athens Turfgrass Research and Education Center in Athens, Georgia, angewendet wurden.

zAbkürzungen: LSD, geringster signifikanter Unterschied; NS, nicht signifikant; WARTEN, Wochen nach der ersten Behandlung. y: Mikrobielle Impfstoffe wurden mit einer Gießkanne in destilliertem Wasser ausgebracht. x: Der NDVI wurde mit einem Chlorophyllmessgerät Field Scout CM 1000 NDVI aufgezeichnet. Der vegetative Index wurde aus den Reflexionswerten auf einer Skala von 0 bis 1 berechnet, wobei 1 am besten ist. Pro Parzelle und Bewertungsdatum wurden durchschnittlich drei Messwerte ermittelt. Visuelle Bewertungen von TC und TQ wurden auf einer Skala von 1 bis 9 aufgezeichnet, wobei eine Bewertung von 6 als akzeptabel angesehen wurde. w: Mittelwerte innerhalb einer Spalte, denen derselbe Kleinbuchstabe folgt, unterscheiden sich nicht wesentlich.

Gewächshausexperimente

Im Sommer 2021 wurden im ATREC-Gewächshauskomplex in Athens, Georgia, Versuche durchgeführt (Abbildung 1). Am 26. Juli 2021 wurde Sahara-II-Bermudagras (unbehandelt) mit einer Menge von 87 Pfund pro Acre (98 Kilogramm pro Hektar) in runde Töpfe gesät, die eine 2:1-Mischung aus sandigem Lehm von Cecil und Wakulla-Sand enthielten . Pro Behandlung und Versuchswiederholung wurden zwei Töpfe aufgestellt, um 3 und 6 Wochen nach der Aussaat (WAS) eine zerstörerische Ernte im Zeitraffer durchzuführen. Eine Stammlösung jedes mikrobiellen Impfmittels wurde mit destilliertem Wasser hergestellt, um die gleichen acht Behandlungen wie zuvor für die Feldversuche beschrieben durchzuführen. Die Impfmittel wurden am 26. Juli 2021 mit einer Spritze gleichmäßig auf die Oberfläche jedes Topfes aufgetragen (Abbildung 2). Am 16. August 2021 wurde mit Behandlungen begonnen, die nacheinander angewendet wurden. Die Töpfe wurden nach der Anwendung des Impfmittels bewässert, um die Behandlungen in den Boden zu transportieren. Zum Vergleich wurde ein unbehandelter Scheck beigefügt. Die Bedingungen im klimatisierten Gewächshaus wurden bei Tag-/Nachttemperaturen von 89/79 F (32/26 C) aufrechterhalten. Die Töpfe wurden bei 3 und 6 WAS destruktiv geerntet. Wurzeln und Sprossen wurden voneinander getrennt, von der gesamten Erde abgewaschen, 48 Stunden lang bei 230 F (110 C) in einem Ofen getrocknet und gewogen, um die Wurzel- und Sprossenbiomasse (Unzen) bei 3 und 6 WAS zu bestimmen.

Tabelle 2.Kohlenstoffausstoß von reifem Tifway-Hybrid-Bermudagras als Reaktion auf mikrobielle Impfmittel, die im Sommer 2021 im Athens Turfgrass Research and Education Center in Athens, Georgia, angewendet wurden.

z: Kohlenstoffausflussmessungen wurden mit einem automatisierten LI-COR 8100A-System zu Versuchsbeginn sowie 4 und 8 WAIT aufgezeichnet, um Einblick in die mikrobielle Aktivität von Pflanzen und Böden (Atmung) zu erhalten. Die bei 4 und 8 WAIT aufgezeichneten Daten wurden mit den zu Beginn des Versuchs aufgezeichneten Daten verglichen, um die Änderung des Kohlenstoffausflusses über die Zeit (Δ) zu berechnen.y: Abkürzungen: LSD, geringster signifikanter Unterschied; NS, nicht signifikant; WARTEN, Wochen nach der ersten Behandlung. x: Mittelwerte innerhalb einer Spalte, denen derselbe Kleinbuchstabe folgt, unterscheiden sich nicht wesentlich.

Feldversuche

ATREC-Standort

Signifikante Unterschiede im NDVI wurden zwischen den Behandlungen 2 WAIT; Allerdings führte keine Behandlung mit mikrobiellem Impfmittel zu statistisch höheren NDVI-Bewertungen als die unbehandelte Kontrolle (Tabelle 1). Die Rasenfarbe und der TQ 2 WAIT lagen zwischen 6,4 und 6,6 bzw. 6,4 und 6,5. Es wurden jedoch keine signifikanten Unterschiede zwischen den Behandlungen beobachtet. Unabhängig von der Behandlung wurden keine signifikanten Unterschiede in der Reaktion auf mikrobielle Impfbehandlungen für NDVI (0,70–0,73) und TC (6,3–6,6) 6 WAIT beobachtet (Tabelle 1). Behandlungen mit mikrobiellem Impfmittel zeigten statistisch gesehen keine höheren TQ-Werte als die unbehandelte Kontrolle (6,8) 6 WAIT; Allerdings führten einzelne und aufeinanderfolgende Anwendungen von AZOS zu TQ-Werten von 6,8 bis 7,0, während der TQ als Reaktion auf aufeinanderfolgende Anwendungen von GLUC 6,8 betrug. Bei 8 WAIT wurden keine signifikanten Unterschiede zwischen den Behandlungen hinsichtlich der TC- (6,1–6,5) und TQ- (6,3–6,5) Bewertungen beobachtet (Tabelle 1). Eine einzelne Anwendung von KLEB1 führte zur höchsten NDVI-Bewertung (0,72), gefolgt von einzelnen und aufeinanderfolgenden Anwendungen von AZOS (0,70–0,71), aufeinanderfolgenden Anwendungen von KLEB2 (0,71) und aufeinanderfolgenden Anwendungen von GLUC (0,70).

Obwohl keine signifikanten Unterschiede zwischen den Behandlungen für CX 4 WAIT beobachtet wurden (ΔCX = 3,4 bis 6,5 µmol m−2 s−1, unabhängig von der Behandlung), erhöhten sich die Atmungsmessungen im Vergleich zu den Messwerten zu Beginn des Versuchs (Tabelle 2). Der ΔCX für die unbehandelte Kontrolle (-2,1 µmol m−2 s−1) war nicht nur negativ, sondern auch der niedrigste unter den Behandlungen 8 WAIT (Tabelle 2). Die höchsten ΔCX-Werte 8 WAIT wurden als Reaktion auf einzelne und aufeinanderfolgende Anwendungen von AZOS (1,7 bzw. 0,8 µmol m−2 s−1) beobachtet, gefolgt von aufeinanderfolgenden Anwendungen von KLEB1 (0,5 µmol m−2 s−1) und Einzelanwendungen Anwendungen von KLEB2 (0,5 µmol m−2 s−1).

Tisch 3.Normalisierter Differenzvegetationsindex (NDVI), Rasenfarbe (TC) und Rasenqualität (TQ) von reifem Tifway-Hybrid-Bermudagras als Reaktion auf mikrobielle Impfungen, die im Sommer 2021 auf einem heimischen Rasen in Bogart, Georgia, angewendet wurden.

z: Abkürzungen: LSD, geringster signifikanter Unterschied; NS, nicht signifikant; WARTEN, Wochen nach der ersten Behandlung. y: Mikrobielle Impfstoffe wurden mit einer Gießkanne in destilliertem Wasser ausgebracht. x: Der NDVI wurde mit einem Chlorophyllmessgerät Field Scout CM 1000 NDVI aufgezeichnet. Der vegetative Index wurde aus den Reflexionswerten auf einer Skala von 0 bis 1 berechnet, wobei 1 am besten ist. Pro Parzelle und Bewertungsdatum wurden durchschnittlich drei Messwerte ermittelt. Visuelle Bewertungen von TC und TQ wurden auf einer Skala von 1 bis 9 aufgezeichnet, wobei eine Bewertung von 6 als akzeptabel angesehen wurde. w: Mittelwerte innerhalb einer Spalte, denen derselbe Kleinbuchstabe folgt, unterscheiden sich nicht wesentlich.

BO-Standort

Es wurden keine statistischen Unterschiede zwischen den Behandlungen für NDVI (0,84–0,87), TC (7,0–7,3) und TQ (6,8–7,0) 2 WAIT beobachtet (Tabelle 3). Aufeinanderfolgende Anwendungen von AZOS führten zum höchsten NDVI (0,70) 6 WAIT, es wurden jedoch keine statistischen Unterschiede zwischen mikrobiellen Impfmittelbehandlungen und der unbehandelten Kontrolle (0,68) beobachtet (Tabelle 3). Einzelanwendungen von KLEB2 und sequentielle Anwendungen von GLUC zeigten den höchsten TC (6,4) und TQ (6,3 bzw. 6,4) 6 WAIT. Allerdings waren TC und TQ für die unbehandelte Kontrolle (6,3 bzw. 6,1) 6 WAIT statistisch ähnlich. Es wurden keine statistischen Unterschiede zwischen den Behandlungen hinsichtlich des NDVI (0,75–0,79) 8 WAIT beobachtet (Tabelle 3). Die Prüfung ohne Behandlung ergab ähnliche oder höhere TC- (6,8) und TQ-Bewertungen (6,6) als alle mikrobiellen Impfbehandlungen. 8 WARTEN.

Die unbehandelte Kontrolle führte zu der größten CX-Reduktion (-5,6 µmol m−2 s−1) 4 WAIT; Als Reaktion auf alle mikrobiellen Impfbehandlungen wurde jedoch ein negativer ΔCX beobachtet (Tabelle 4). Der ΔCX bei 4 WAIT als Reaktion auf Einzelanwendungen von GLUC (-1,3 µmol m−2 s−1), einzelne und aufeinanderfolgende Anwendungen von AZOS (-1,6 bzw. -1,4 µmol m−2 s−1) und Einzelanwendungen von KLEB2 (-2,1 µmol m−2 s−1) waren statistisch gesehen größer als die der unbehandelten Kontrolle 4 WAIT. Die Messungen des Kohlenstoffausstoßes gingen unabhängig von der Behandlung weiter zurück. 8 WAIT; jedoch aufeinanderfolgende Anwendungen von KLEB2 (-4,3 µmol m−2 s−1), Einzelanwendungen von GLUC und AZOS (-4,8 µmol m−2 s−1) und Einzelanwendungen von KLEB2 (-5,7 µmol m−2 s−1). ) führte zu den geringsten CX-Reduktionen (Tabelle 4). Negative ΔCX-Messungen an dieser Stelle könnten mit der Bodenfeuchtigkeit zusammenhängen. Obwohl während der Versuchsdauer 13 Zoll Niederschlag aufgezeichnet wurden, war die Bodenfeuchtigkeit während der CX-Messungen möglicherweise unzureichend, da der Niederschlag nicht programmgesteuert auftrat, wie es am bewässerten ATREC-Standort der Fall war.

Tabelle 4.Kohlenstoffausstoß von reifem Tifway-Hybrid-Bermudagras als Reaktion auf mikrobielle Impfungen, die im Sommer 2021 auf einem heimischen Rasen in Bogart, Georgia, angewendet wurden.

z: Kohlenstoffausflussmessungen wurden mit einem automatisierten LI-COR 8100A-System zu Versuchsbeginn sowie 4 und 8 WAIT aufgezeichnet, um Einblick in die mikrobielle Aktivität von Pflanzen und Böden (Atmung) zu erhalten. Die bei 4 und 8 WAIT aufgezeichneten Daten wurden mit den zu Beginn des Versuchs aufgezeichneten Daten verglichen, um die Änderung des Kohlenstoffausflusses über die Zeit (Δ) zu berechnen. y: Abkürzungen: LSD, geringster signifikanter Unterschied; NS, nicht signifikant; WARTEN, Wochen nach der ersten Behandlung. x: Mittelwerte innerhalb einer Spalte, denen derselbe Kleinbuchstabe folgt, unterscheiden sich nicht wesentlich.

Gewächshausexperimente

Im Versuchslauf 1 wurden signifikante Unterschiede beim Wurzelgewicht beobachtet (0,008 bis 0,013 Unzen/0,23 bis 0,37 Gramm). 3 WAS; Allerdings führte keine Behandlung mit mikrobiellem Impfmittel zu einem statistisch höheren Wurzelgewicht als die unbehandelte Probe (0,011 Unzen/0,32 Gramm) (Tabelle 5). Hinsichtlich des Triebgewichts (0,025 bis 0,034 Unzen/0,71 bis 0,96 Gramm) wurden keine statistischen Unterschiede beobachtet. 3 WAS. Das größte Wurzelgewicht 6 WAS wurde als Reaktion auf aufeinanderfolgende Anwendungen von KLEB1 (0,121 Unzen/3,43 Gramm) beobachtet, gefolgt von der unbehandelten Kontrolle (0,119 Unzen/3,37 Gramm) und Einzelanwendungen von AZOS (0,118 Unzen/3,35 Gramm). ) (Tabelle 5). Einzelne Anwendungen von KLEB1 führten zum höchsten Sprossgewicht (0,252 Unzen/7,14 Gramm) 6 WAS; Allerdings war das Sprossgewicht des unbehandelten Schecks (0,189 Unzen/5,36 Gramm) statistisch ähnlich. Die Wurzel- und Sprossgewichte bei 3 und 6 WAS in Versuchsdurchlauf 2 waren unabhängig von der Behandlung geringer als die in Durchlauf 1 beobachteten Gewichte. In Versuchsdurchgang 2 wurde unabhängig vom Erntedatum keine Signifikanz hinsichtlich der Wurzel- und Sprossgewichte beobachtet. Darüber hinaus waren die Wurzel- und Sprossgewichte in Durchlauf 2 unabhängig von der Behandlung geringer als in Durchlauf 1 (Tabelle 5). Unterschiede in der Biomasse zwischen Durchgängen können auf die Position jedes Versuchs innerhalb ihrer Gewächshäuser zurückzuführen sein. Obwohl beide Versuche die gleiche Bewässerungsmenge erhielten, trocknete Lauf 2 möglicherweise schneller aus als Lauf 1, da er näher an den Gewächshausventilatoren statt an den Kühlpads lag.

Tabelle 5.Wurzel- und Sprossgewicht von ausgesätem Sahara-II-Bermudagras als Reaktion auf mikrobielle Impfmittel, die im Frühjahr 2021 im Gewächshaus in Athens, Georgia, ausgebracht wurden.

z: Abkürzungen: LSD, geringster signifikanter Unterschied; NS, nicht signifikant; WAS, Wochen nach der Aussaat. y: Mikrobielle Impfstoffe wurden mit einer Spritze in destilliertem Wasser aufgetragen. x: Wurzeln und Triebe wurden voneinander getrennt, von jeglicher Erde befreit, 48 Stunden lang bei 230 F (110 °C) in einem Ofen getrocknet und gewogen, um die Wurzel- und Triebbiomasse (Unzen) zu bestimmen.wBedeutet innerhalb einer Spalte, gefolgt von die gleichen Kleinbuchstaben unterscheiden sich nicht wesentlich.

Mikrobielle Impfmittelanwendungen führten nicht konsistent zu einem Anstieg der NDVI, TC, TQ und CX von Hybrid-Bermudagras auf dem Feld oder der Wurzel- und Sprossbiomasse von gewöhnlichem Bermudagras im Gewächshaus. Als Reaktion auf mehrere Behandlungen mit mikrobiellen Impfmitteln wurden jedoch dickere Wurzeln beobachtet, was darauf hindeutet, dass eine Kolonisierung stattgefunden hat. Mehrjährige Anbausysteme wie Rasengras können größere Herausforderungen für den Einsatz und die Leistung von mikrobiellen Impfmitteln mit sich bringen. Endemische Mikrobenpopulationen, die sich an das Überleben und die Vermehrung in Rasenumgebungen angepasst haben, können nicht-endemischen Mikroorganismen, die kürzlich in das System eingeführt wurden, Konkurrenz machen. Darüber hinaus können kulturelle Praktiken (z. B. Belüftung und Topdressing) und Managementeinflüsse (z. B. Düngemittel, Bewässerung und Pestizide), die speziell für das Wachstum und die Produktion von Rasengras gelten, die mikrobielle Aktivität, Persistenz und Artenvielfalt durch physikalische und chemische Manipulation des Bodens beeinflussen. Rasengrasarten können auch eine entscheidende Rolle in symbiotischen Beziehungen zwischen Pflanzenwurzeln und Bodenmikroorganismen spielen. Die Relevanz früherer Feldforschungen ist möglicherweise begrenzt, da die meisten Forschungsversuche nur wenige Monate dauerten. Zukünftige Forschungen sollten die Inokulationshäufigkeit, die Boden- und Pflanzenpersistenz und die Verwendung mikrobieller Mischungen untersuchen, um die besten Managementpraktiken zu ermitteln, die zu den größten Chancen für die Besiedlung und den daraus resultierenden Vorteilen für Rasengras führen.

Gerald M. Henry, Ph.D., ([email protected]) ist der vom Sportverband gestiftete Professor für Umweltrasenwissenschaft; Connor Bolton, MS, ist ein ehemaliger Doktorand; Miguel L. Cabrera, Ph.D., ist Georgia Power-Professor für Umweltsanierung und Bodenchemie; Mussie Habteselassie, Ph.D., ist Professor für Bodenmikrobiologie; und Kevin A. Tucker, MS, ist wissenschaftlicher Mitarbeiter, alle an der University of Georgia, Athens